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1)头孢西丁敏感试验：AmpC酶可以水解头孢西丁（FOX），即产AmpC酶的菌株对头孢西丁耐药。而超广谱β内酰胺酶（ESBLs）等其他β内酰胺酶一般不能分解头孢西丁，即产ESBLs的菌株对头孢西丁敏感。利用AmpC酶的这一特性，可以对产AmpC酶的菌株进行初步筛选。
2)三维试验：三维试验也是利用AmpC酶可以水解头孢西丁的原理，先用冻融法或超声粉碎法将待检菌株中的β内酰胺酶提取出来（粗提），观察这种酶的粗提物对头孢西丁的抑制情况。如果粗提物中有AmpC酶存在，即可抑制头孢西丁的活性，使其周围对头孢西丁敏感的大肠埃希菌得以生长;反之，大肠埃希菌受头孢西丁的抑制则不能生长。
AmpCβ内酰胺酶（简称AmpC酶）是由肠杆菌科细菌或（和）绿脓假单胞菌的染色体或质粒介导产生的一类β内酰胺酶，属β内酰胺酶Ambler分子结构分类法中的C类和Bush-Jacoby-Medeiros功能分类法中第一群，即作用于头孢菌素且不被克拉维酸所抑制的β内酰胺酶。故AmpC酶又称作为头孢菌素酶。
1 AmpC酶的分类
AmpC酶按其产生的方式3类:诱导高产酶、持续高产酶和持续低产酶。
1.1 诱导高产酶 AmpC酶的合成往往与β-内酰胺类抗生素的存在有关。绝大部分肠杆菌科细菌和绿脓假单胞菌在正常条件下（即无β内酰胺类抗生素存在的条件下）只产生少量的AmpC酶。而当有诱导作用的β内酰胺类抗生素存在的条件下，AmpC酶的产量明显增加，增加的范围在100～1000倍之间。
1.2 持续高产酶 另有一部分产AmpC酶的菌株不论在有无β内酰胺类抗生素存在的条件下均可持续高水平产生AmpC酶，其原因为去阻遏突变，即调控基因之一的ampD基因发生突变，产生的有缺陷的AmpD蛋白，而不能与另调控蛋白-AmpR蛋白结合形成复合物，AmpR蛋白即以激活子状态发挥激活作用，引起AmpC酶的大量表达。质粒介导的AmpC酶往往都属于此类AmpC酶。产生种AmpC酶的细菌对临床的危害最大，是临床微生物实验室检测的重点。
1.3 持续低产酶 还有极少部分产AmpC酶的菌株，不论在有无β内酰胺类抗生素的存在的条件下均持续低水平的产生AmpC酶，其原因可能是另一种调节基因-ampR基因发生突变，产生有缺陷的AmpR蛋白，不能在无β内酰胺类抗生素存在的条件下起到抑制子的作用，也不能在有β内酰胺类抗生素存在的条件下起到激活子的作用，故AmpC酶得以持续低水平地表达。
2 AmpCβ内酰胺酶的检测方法
检测不同类型的AmpC酶或检测产不同类型AmpC酶的菌株，其方法也有所不同。已陆续报道了多种检测AmpC酶的方法，除改良的三维试验较为经典外，其他的检测方法还不成熟，尚在摸索，试验阶段，检测的结果也各不相同。现讲述如下。
2.1 头孢西丁敏感试验AmpC酶可以水解头孢西丁（FOX），即产AmpC酶的菌株对头孢西丁耐药。而超广谱β内酰胺酶（ESBLs）等其他β内酰胺酶一般不能分解头孢西丁，即产ESBLs的菌株对头孢西丁敏感。利用AmpC酶的这一特性，可以对产AmpC酶的菌株进行初步筛选。
具体操作方法:（1）纸片扩散法:按美国临床实验室标准化委员会（NCCLS）的纸片扩散（K-B）法进行。FOX纸片的含量为30μg。判断标准为抑菌环<18mm，表示待检菌株对FOX耐药。（2）稀释法:手工的（微量）肉汤稀释方法参照NCCLS的方法进行;也可用MicroScan等微生物分析仪进行分析，操作方法按其操作规程进行。判断标准为MIC>16μg/ml表示待检菌株对FOX耐药。对FOX耐药的菌株，应怀疑产AmpC酶可能。但是Coudron等利用该标准检测肺炎克雷伯菌，大肠埃希菌和奇异变形杆菌AmpC酶时发现28株头孢西丁抑菌环<18mm的肺炎克雷伯菌中，只有4株产AmpC酶，有2株产AmpC酶的大肠埃希菌的抑菌环分别为17mm和18mm。故此方法仅仅作为初步筛选。需做三维试验或纸片协同试验等试验，进行进一步的确定。
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